BUGA-CoL Type I Atelocollagen Solutions for Cell Culture (in PBS) Sterile Filtrated BSE Free 6mg/ml
Ürün Bilgisi
BUGA-CoL Type I Atelocollagen Solutions for Cell Culture (in PBS), Sterile Filtrated, BSE Free, 6 mg/ml (BUGA-Atelocol Solutions-CC), medikal saflıkta üretilen bir ürün olmasıyla birlikte, saflık (> %99,9 kolajen içeriği), işlevsellik ve mevcut doğal kolajen açısından tüm kolajenlerin standardıdır. BUGA-Atelocol Solutions-CC, FDA onaylı viral inaktivasyon çalışmalarına tabidir.
TSE/BSE statüsünde olmayan ülkelerden hammadde tedariği yapılarak TSE EN ISO 22442 1-2-3 standardları kapsamında üretim gerçekleştirilir.
TSE/BSE kalıntısının olmadığı analiz sertifikasında Avrupa Farmakopisi (EP 2.6.14 Metot C) ve Amerikan Farmakopisi (USP<85>) test metotları ile verilir.
BUGA-Atelocol Solutions-CC, yaklaşık %97 Tip I kolajen, %3’ü ise Tip III kolajenden oluşur.
BUGA-Atelocol Solutions-CC, BSE içermeyecek şekilde uygun por çaplarına sahip filtreler ile filtrelenerek steril halde kullanımınıza sunulur.
BUGA-Atelocol Solutions-CC, hücrelerin kültürlenmesi için ince tabakaların hazırlanması veya katı jel olarak kullanılan uygulamarda direk olarak kullanabilirsiniz.
• Atelokolajenin 6 mg/ml konsantrasyonunda PBS ortamında hazırlanmış çözeltisi kullanıma hazır üründür.
• Gerek hücre kültürü uygulamalarında gerekse doku iskelesi tasarımında belirlediğiniz derişime PBS ile seyrelterek kullanabilirsiniz.
• Uzun süreli kullanılmama durumunda +4 °C’de saklayınız.
• Çözelti ürünü vorteksleme, hızlı çalkalama yapmayınız. Dondurma ve tekrar çözüp kullanma işlemi çapraz bağlanmaya neden olacağından önerilmez.
• Hücre Kültürü
• Doku İskelesi Tasarımları
• 3d Biyomalzemeler
• Biyomühendislik
• Malzeme Bilimi
• Biyoteknoloji
• Nanoteknoloji
Ürünün Teknik Özellikleri
Görünüm | Yoğun beyaz renkte | |
Koku | Uygun veri yoktur | |
Ekstraksiyon yöntemi | Enzimatik-Atelokolajen (PBS içerisinde) | |
Sterilizasyon yöntemi | Filtrasyon | |
Çözünürlük/Kolajen konsantrasyonu | 6 mg/ml (PBS içinde) | |
Saklama sıcaklığı | 2-8 ºC | |
Raf ömrü | Üretim tarihinden itibaren 3 ay | |
Ambalaj miktarı | 100 ml- 1000ml | |
Kaynak (Hayvan türü) | Sığır tendonu | |
Endotoksin/LAL Avrupa Farmakopisi (EP 2.6.14 Metot C) Amerikan Farmakopisi (USP<85>) | <0,1 EU/ml | |
Mikrobiyolojik Analiz Amerikan Farmakopisi (USP<61>) | Aerobik Mezofilik Bakteri kob/ml | <10 |
Anaerobik Mezofilik Bakteri (30 ℃) kob/ml | <10 | |
Küf-Maya kob/ml | <10 | |
SDS PAGE (moleküler ağırlık ve safsızlık belirlenmesi) | 125-150 kDa moleküler ağırlığında α-1 ve α-2, 275 kDa üzerinde β ve γ zincirleri görülmektedir | |
• Gehwolf, R., Spitzer, G., Wagner, A., Lehner, C., Weissenbacher, N., Tempfer, H., & Traweger, A. (2019). 3D-embedded cell cultures to study tendon biology. Stem Cells and Aging: Methods and Protocols, 155-165.
• Rahmanian, M., & Heldin, P. (2002). Testicular hyaluronidase induces tubular structures of endothelial cells grown in three‐dimensional colagen gel through a CD44‐mediated mechanism. International journal of cancer, 97(5), 601-607.
• Szász, C., Pap, D., Szebeni, B., Bokrossy, P., Őrfi, L., Szabó, A. J., ... & Veres-Székely, A. (2023). Optimization of Sirius Red-Based Microplate Assay to Investigate Collagen Production In Vitro. International Journal of Molecular Sciences, 24(24), 17435.
• Song, Y., Zhang, Y., Qu, Q., Zhang, X., Lu, T., Xu, J., ... & Xiong, R. (2023). Biomaterials based on hyaluronic acid, collagen and peptides for three-dimensional cell culture and their application in stem cell differentiation. International Journal of Biological Macromolecules, 226, 14-36.
• Bouhlel, W., Kui, J., Bibette, J., & Bremond, N. (2022). Encapsulation of cells in a collagen matrix surrounded by an alginate hydrogel shell for 3D cell culture. ACS Biomaterials Science & Engineering, 8(6), 2700-2708.
• Iwamoto, Y., Haraguchi, R., Nakao, R., Aoki, S., Oishi, Y., & Narita, T. (2022). One-Pot Preparation of Collagen Tubes Using Diffusing Gelation. ACS omega, 7(26), 22872-22878.
• Besseau, L., Coulomb, B., Lebreton-Decoster, C., & Giraud-Guille, M. M. (2002). Production of ordered collagen matrices for three-dimensional cell culture. Biomaterials, 23(1), 27-36.
• Sung, K. E., Su, G., Pehlke, C., Trier, S. M., Eliceiri, K. W., Keely, P. J., ... & Beebe, D. J. (2009). Control of 3-dimensional collagen matrix polymerization for reproducible human mammary fibroblast cell culture in microfluidic devices. Biomaterials, 30(27), 4833-4841.
• Themistocleous, G. S., Katopodis, H., Sourla, A., Lembessis, P., Doillon, C. J., Soucacos, P. N., & Koutsilieris, M. (2004). Three-dimensional type I collagen cell culture systems for the study of bone pathophysiology. in vivo, 18(6), 687-696.
• Artym, V. V., & Matsumoto, K. (2010). Imaging cells in three‐dimensional collagen matrix. Current protocols in cell biology, 48(1), 10-18.
